70. Apa tindakan pencegahan untuk penentuan klorin residual?
Klorin sangat tidak stabil dalam larutan berair, terutama pada konsentrasi rendah, dan konten akan berkurang dengan cepat. Tingkat pengurangan klorin akan dipercepat saat terpapar sinar matahari dan cahaya kuat lainnya atau gelisah. Oleh karena itu, sampel tidak dapat disimpan setelah pengambilan sampel, dan penentuan klorin harus segera dimulai, sambil menghindari paparan cahaya dan agitasi sampel air.
Semua operasi selama proses penentuan harus menghindari paparan sinar matahari langsung, dan yang terbaik adalah dilakukan pada suhu serendah mungkin dan cahaya lunak. Selain itu, semua metode kolorimetri membutuhkan warna dan kekosongan kekeruhan untuk mengimbangi warna dan kromatik air baku, terutama ketika kekeruhan dan kromatik tinggi, nilai kosong harus ditentukan.
Saat menggunakan metode kolorimetri visual O-tolidin untuk menentukan sisa klorin, jika sampel air dicampur secara merata dengan larutan O-tolidin standar dan kemudian metode kolorimetri dilakukan segera, hasil yang diukur adalah klorin residu bebas. Jika sampel air ditempatkan di tempat gelap selama 10 menit untuk menghasilkan kromatik tertinggi sebelum metode kolorimetri dilakukan, hasilnya adalah total residu klorin. Klorin residu total dikurangi klorin residu bebas adalah gabungan klorin residu.
Saat menggunakan metode kolorimetri visual O-tolidin untuk menentukan, jika sisa klorin besar, warna oranye-kuning akan diproduksi; Jika alkalinitas sampel air terlalu tinggi dan sisa klorin kecil, warna hijau muda atau biru muda akan diproduksi. Pada saat ini, 1 mL larutan standar O-Tolidine dapat ditambahkan untuk menghasilkan warna kuning muda yang normal.
71. Apa perbedaan antara fase biologis metode biofilm dan lumpur teraktivasi?
Karakteristik fase biologis dari sistem perawatan biofilm berbeda dari proses lumpur yang diaktifkan, terutama dalam hal spesies mikroba dan distribusi.
Generally speaking, due to the gradual change in water quality and the improvement of the environmental conditions for microbial growth, the types and quantities of microorganisms in the biofilm system are more than those in the activated sludge process, and the food chain is long and more complex, especially the increase in the number of filamentous fungi, protozoa and metazoans, and there is also a certain proportion of anaerobic bacteria and facultative bacteria. Alga dapat muncul di area yang terpapar sinar matahari, dan serangga seperti lalat filter juga dapat muncul. Karakteristik distribusi adalah bahwa sepanjang ketebalan biofilm (dari permukaan ke dalam) atau arah pengaruh (waktu kontak yang berbeda dengan pengaruh), jenis dan jumlah mikroorganisme menunjukkan perbedaan besar. Pada tahap pertama perawatan multi-tahap atau bagian atas lapisan pengisi aliran ke bawah, biofilm sering didominasi oleh bakteri flokulen, dan ketebalan film juga relatif besar (2-3mm); Dengan meningkatnya jumlah tahapan atau bagian bawah lapisan pengisi aliran ke bawah, karena kualitas air yang dihubungi sebagian telah diperlakukan sebagian, bakteri yang lebih filamen, protozoa dan metazoa secara bertahap akan muncul di biofilm; Jenis-jenis mikroorganisme meningkat, tetapi ketebalan biofilm terus menurun (1-2mm). Mikroorganisme pada permukaan biofilm semuanya aerobik, dan ketika ketebalan meningkat, mikroorganisme secara bertahap menjadi fakultatif atau bahkan anaerob.
Biofilm ditetapkan pada bahan filter atau pengisi, dan waktu retensi padat biologis SRT (usia lumpur) panjang, sehingga dapat menumbuhkan mikroorganisme dengan waktu generasi yang lama dan tingkat proliferasi yang sangat rendah, seperti bakteri nitrifikasi. Sejumlah besar bakteri filamen juga dapat muncul di biofilm, tetapi bulking lumpur tidak akan terjadi. Dibandingkan dengan metode lumpur yang diaktifkan, proporsi nutrisi hewan dalam organisme pada biofilm lebih besar, tingkat kelangsungan hidup mikro-hewan juga lebih tinggi, dan dapat menghuni organisme tingkat nutrisi tinggi. Oligochaetes dan serangga menghuni di atas ciliate predator, rotifers, dan nematoda. Oleh karena itu, rantai makanan pada biofilm lebih panjang dari rantai makanan dalam lumpur yang diaktifkan, itulah sebabnya jumlah lumpur yang dihasilkan oleh metode biofilm kurang dari metode lumpur yang diaktifkan.
Mikroorganisme karakteristik pada setiap level atau setiap lapisan pengisi akan berbeda karena kualitas air limbah yang berbeda, yaitu perubahan kualitas air akan menyebabkan perubahan dalam jenis dan jumlah mikroorganisme dalam biofilm. Ketika konsentrasi yang berpengaruh meningkat, dapat diamati bahwa mikroorganisme karakteristik dari tingkat asli bergerak ke bawah, yaitu, mikroorganisme awalnya pada level depan atau lapisan atas pengisi dapat muncul di level belakang atau lapisan pengisi yang lebih rendah. Oleh karena itu, perubahan serupa dapat diamati melalui pengamatan fase biologis untuk menyimpulkan perubahan dalam konsentrasi air limbah atau beban lumpur.
72. Apa arti dari total indikator jumlah bakteri dalam air?
Total jumlah bakteri mengacu pada jumlah koloni yang ditanam dalam 1ml sampel air dalam medium agar nutrisi setelah kultur pada 37oC selama 24 jam. Unit pengukuran umumnya jumlah total bakteri yang terkandung dalam setiap ml air. Jumlah total bakteri dalam air sering terkait dengan tingkat polusi organik dalam badan air, dan merupakan salah satu indikator penting untuk mengevaluasi tingkat polusi air dan kemungkinan kerusakan pada tubuh manusia.
Metode analisis dari jumlah total bakteri menggunakan metode pelat standar untuk menghitung bakteri dalam sampel air, yang merupakan metode untuk menentukan kepadatan bakteri heterotrofik anaerob aerobik dan fakultatif dalam air. Namun, karena tidak ada basis nutrisi atau kondisi lingkungan apa pun yang dapat memenuhi kebutuhan fisiologis semua bakteri dalam sampel air, dan bakteri dalam air dapat ada dalam bentuk individu, pasangan, rantai, kelompok atau kelompok, jumlah koloni yang diukur sebenarnya lebih rendah daripada jumlah bakteri yang benar -benar bertahan dalam sampel air yang diuji.
73. Apa tindakan pencegahan untuk menentukan jumlah total bakteri?
Use the aseptic operation method to absorb 1mL of water sample or 2 to 3 diluted water samples with appropriate dilution multiples, inject them into the sterilized plate, then pour 15mL of nutrient agar medium and mix it thoroughly with the water sample, make two parallel samples for each water sample, and in addition, a blank control with only nutrient agar medium poured in each test should be made.
Setelah budaya, jumlah koloni plat harus segera dilakukan. Jika jumlah harus ditunda, pelat dapat disimpan dalam lingkungan 5-10oC, tetapi tidak selama lebih dari 24 jam, dan praktik ini tidak boleh digunakan sebagai metode operasi rutin.
Saat menghitung koloni pelat, Anda dapat mengamati dengan mata telanjang. Untuk mencegah kelalaian, gunakan kaca pembesar untuk memeriksa apakah perlu. Untuk koloni -koloni yang terlihat serupa dan dekat satu sama lain tetapi tidak menyentuh, selama jaraknya kurang dari diameter koloni terkecil, mereka harus dihitung secara terpisah. Koloni -koloni yang bersentuhan dekat tetapi memiliki penampilan yang berbeda (morfologi atau warna) juga harus dihitung secara terpisah.
Saat menghitung jumlah koloni rata -rata dari pengenceran yang sama, jika salah satu pelat memiliki koloni serpihan besar tumbuh, itu tidak boleh digunakan, dan pelat tanpa koloni serpihan harus digunakan sebagai jumlah koloni pengenceran. Jika koloni serpihan kurang dari setengah pelat dan distribusi koloni yang tersisa sangat seragam, jumlah koloni 1/2 dari pelat dengan pertumbuhan yang seragam dapat dikalikan dengan 2 untuk mewakili jumlah koloni dari seluruh pelat.
Hasil dari total jumlah bakteri adalah jumlah total koloni di setiap lempeng atau jumlah rata -rata koloni dalam pelat eksperimental paralel dari pengenceran yang sama dikalikan dengan kelipatan pengenceran. Ketika hasil akhir dalam 100, hasilnya dicatat sesuai dengan jumlah aktual koloni; Ketika lebih besar dari 100, dua angka signifikan digunakan dan dinyatakan sebagai eksponen 10. Jika jumlah koloni tidak dapat dihitung, banyak pengenceran harus dicatat ketika melaporkan hasilnya.
74. Bagaimana cara menghitung jumlah total bakteri dalam sampel air berdasarkan hasil jumlah koloni?
Saat menghitung hasil tes dari jumlah total bakteri, perlu untuk membandingkan dan menghitung berdasarkan jumlah rata -rata koloni pada pengenceran yang berbeda. Metode ini adalah sebagai berikut:
⑴ Pertama, pilih kasus di mana jumlah rata -rata koloni adalah antara 30 dan 300 untuk perhitungan. Ketika jumlah rata -rata koloni hanya pada satu pengenceran memenuhi kisaran ini, jumlah rata -rata koloni yang dikalikan dengan beberapa pengenceran digunakan sebagai hasil dari jumlah total bakteri dalam sampel air.
⑵ Jika jumlah rata -rata koloni pada dua pengenceran adalah antara 30 dan 300, metode perhitungan harus ditentukan sesuai dengan rasio keduanya. Jika rasionya kurang dari 2, rata -rata jumlah koloni rata -rata dikalikan dengan banyak pengenceran harus digunakan sebagai hasil dari total jumlah bakteri sampel air; Jika rasionya lebih besar dari 2, lebih kecil dari jumlah koloni rata -rata dikalikan dengan kelipatan pengenceran harus digunakan sebagai hasil dari total jumlah bakteri sampel air.
⑶Jika jumlah koloni rata -rata dari semua pengenceran lebih besar dari 300, jumlah koloni rata -rata dari pengenceran terbesar multipel dikalikan dengan pengenceran multipel harus digunakan sebagai hasil dari total jumlah bakteri sampel air.
⑷Jika jumlah koloni rata -rata dari semua pengenceran kurang dari 30, jumlah koloni rata -rata dari pengenceran terkecil beberapa dikalikan dengan pengenceran kelipatannya harus digunakan sebagai hasil dari total jumlah bakteri sampel air.
⑸Jika jumlah koloni rata -rata semua pengenceran tidak antara 30 dan 300, jumlah koloni rata -rata terdekat dengan 30 atau 300 dikalikan dengan pengenceran kelipatannya harus digunakan sebagai hasil dari total jumlah bakteri sampel air.
75. Apa arti jumlah coliform (nilai)?
Bakteri coliform merujuk pada kelas anaerob aerobik atau facultatif, fermentasi laktosa, gram negatif, batang bebas spora, sehingga kadang-kadang juga disebut coliform fecal atau Escherichia coli. Bakteri coliform dapat menghasilkan asam dan gas setelah dikultur dalam medium laktosa pada 37oC selama 24 jam. Jumlah (nilai) bakteri coliform umumnya diukur dalam jumlah bakteri coliform yang terkandung dalam 1L atau 100ml air.
Jika sumber air terkontaminasi oleh tinja, itu dapat terkontaminasi oleh patogen usus dan menyebabkan penyakit menular usus. Karena patogen usus menyumbang proporsi yang relatif kecil dari jumlah mikroorganisme, seringkali sangat sulit untuk memisahkan patogen dari air, terutama air keran. Bakteri coliform adalah jenis bakteri yang paling umum dan terbesar di antara bakteri aerobik usus, sehingga sering digunakan sebagai bakteri indikator untuk kontaminasi tinja. Artinya, jumlah bakteri coliform dalam air digunakan untuk menilai apakah sumber air terkontaminasi oleh tinja, dan kemungkinan menyimpulkan bahwa sumber air terkontaminasi oleh patogen usus terdeteksi.
76. Apa metode untuk menentukan jumlah bakteri coliform?
Ada dua metode yang umum digunakan untuk menentukan bakteri coliform total: metode fermentasi multi-tabung dan metode filter membran.
Metode fermentasi multi-tabung didasarkan pada karakteristik bakteri coliform seperti fermentasi laktosa, pewarnaan gram negatif, tidak ada spora, dan berbentuk batang. Ini diuji melalui tiga langkah untuk menentukan jumlah total bakteri coliform dalam sampel air. Metode fermentasi multi-tabung menggunakan angka yang paling mungkin untuk mengekspresikan hasil eksperimen, juga dikenal sebagai MPN. Ini sebenarnya adalah metode untuk memperkirakan kepadatan dan kualitas sanitasi E. coli dalam badan air berdasarkan teori statistik. Perkiraan ini cenderung lebih besar dari angka sebenarnya. Nilai perkiraan jumlah coliform ditentukan oleh pengenceran yang menunjukkan hasil positif dan negatif. Saat merancang jumlah pengulangan yang diperlukan untuk pengujian sampel air, itu harus didasarkan pada keakuratan data yang diperlukan.
Metode filter membran menggunakan membran mikropori yang disterilkan khusus untuk menyaring sampel air. Setelah bakteri terperangkap pada membran, membran melekat pada media kultur natrium sulfit fuchsin untuk kultur. Karena bakteri coliform dapat memfermentasi laktosa, koloni merah ungu dengan kilau logam akan muncul setelah budidaya pada membran filter. Dengan menghitung jumlah koloni dengan karakteristik ini pada membran filter, jumlah bakteri coliform yang terkandung dalam setiap liter sampel air dapat dihitung. Metode membran filter dapat mengukur volume sampel air yang lebih besar dan dapat memperoleh hasil lebih cepat daripada metode fermentasi multi-tabung, tetapi efeknya buruk ketika kekeruhan tinggi dan kepadatan non-E. Bakteri coli tinggi.
77. Apa itu sisa klorin?
Residual klorin adalah klorin yang tersisa di dalam air setelah air didisinfeksi dengan klorin untuk jangka waktu tertentu. Fungsinya adalah mempertahankan kemampuan bakterisida kontinu. Dari saat air memasuki jaringan pipa ke titik air, efek desinfektan di dalam air harus dipertahankan untuk mencegah kemungkinan kerusakan patogen dan pertumbuhan kembali. Ini mensyaratkan bahwa jumlah desinfektan yang ditambahkan ke air tidak hanya memenuhi kebutuhan membunuh patogen di dalam air, tetapi juga mempertahankan jumlah residual tertentu untuk mencegah pertumbuhan kembali patogen selama proses transportasi air. Jika desinfeksi klorin digunakan, maka bagian dari desinfektan yang melebihi kebutuhan desinfeksi pada waktu itu adalah sisa klorin.
Klorin residu memiliki dua bentuk: klorin residu gratis (CL2, HOCL dan OCL-) dan kombinasi klorin residu (NH2CL, NHCL2 dan NCL3). Kedua bentuk ini dapat ada dalam sampel air yang sama secara bersamaan, dan jumlah keduanya disebut total klorin residu. Klorin residu bebas memiliki kemampuan bakterisida yang kuat, tetapi mudah diuraikan. Klorin residu gabungan memiliki kemampuan bakterisida yang lemah, tetapi bertahan lebih lama dalam air. Secara umum, ketika tidak ada amonia atau amonium di dalam air, sisa klorin adalah klorin residu bebas, sedangkan ketika ada amonia atau amonium dalam air, sisa klorin biasanya hanya mengandung klorin residu gabungan, dan kadang -kadang sisa klorin dan kombinasi kombinasi klorin koeksist. Jumlah sisa klorin harus sesuai. Terlalu rendah tidak akan berperan dalam mencegah dan mengobati patogen. Terlalu tinggi tidak hanya akan meningkatkan biaya desinfeksi, tetapi juga dapat menyebabkan kerusakan pada tubuh manusia ketika bersentuhan dengan tubuh manusia.
Secara konseptual, sisa klorin mengacu pada gas klorin dan desinfektan seri klorin. Saat menggunakan desinfektan non-klorin lainnya seperti klorin dioksida, sisa klorin harus dipahami sebagai disinfektan yang tersisa yang tersisa di dalam air setelah periode kontak tertentu.
78. Apa metode untuk menentukan sisa klorin? Apa lingkup masing -masing yang berlaku?
Penentuan klorin residu dapat dilakukan dengan titrasi yodium, kolorimetri visual O-tolidin, N, n-diethyl-p-p-phenylenediamine (DPD) titrasi ferrous (GB 11897-89), NTIFID (N-diethyl-p-p-Phenylenediamine spectroprophetry (GB 1188 (GB 1188, E. klorin dalam sampel air; Metode kolorimetri visual O-tolidin dapat menentukan total klorin residu dan klorin residu bebas masing-masing dengan mengubah prosedur operasi; Metode titrasi N, N-diethyl-P-p-phenylenediamine atau metode spektrofotometri dapat menentukan klorin bebas atau total klorin dalam kisaran konsentrasi 0,03-5 mg/L, dan dengan mengubah prosedur operasi, monokloramin, dikloramin dan beberapa komponen klorin kombinasi juga dapat ditentukan secara masing-masing.
Metode titrasi yodium cocok untuk sampel air dengan total kandungan klorin residual lebih besar dari 1 mg/L, dan merupakan metode yang umum digunakan untuk menentukan jumlah klorin yang ditambahkan. Metode kolorimetri visual O-tolidin mudah dioperasikan dan merupakan metode umum untuk menentukan sisa klorin dalam air minum. Kisaran pengukuran adalah 0,01-10 mg/L. Metode titrasi N, N-diethyl-P-p-phenylenediamine atau metode spektrofotometri memiliki sensitivitas tinggi dan dapat menentukan sampel air dengan kandungan klorin residu rendah. Sangat cocok untuk menentukan total klorin yang tersedia dalam limbah yang mengandung bahan organik. Kisaran pengukuran dari kedua metode tersebut masing-masing adalah 0,05-1,5 mg/L dan 0,03-5 mg/L.